番红液可以用什么代替（番红染液怎么洗掉）

摘要： 3、结晶紫染液、番红染液如何配制?...

本篇目录：

• 1、微生物染色液配制后可以用多久
• 2、染植物用番红水溶液还是酒精溶液
• 3、结晶紫染液、番红染液如何配制?
• 4、常用染色剂的染色剂
• 5、芽孢细菌若不通过芽孢染色法,在显微镜下如何识别?
• 6、给细菌染色的方法都有几种,怎么操作,都用复红染色

微生物染色液配制后可以用多久

1、一个星期 配好的溶液1个星期内有效 ， 最好4度保存 。

2、HE染完的切片可以放1-2年。切片存放1-2年后退色。所以你可以根据需要灵活选择。 苏木素伊红（HE)染色液规格：2*100ml，2*500ml分类：HE染色保存：室温，避光。

3、次。根据查询中国药典规定显示：培养基灵敏度检查所用的微生物菌株传代次数不得超过5次，以防止菌株因传代次数过多引起衰退影响检验。其检查项目包括细菌数、霉菌数、酵母菌数及控制菌检查。

4、微生物染色分HE染色和TC染色。 HE染色是组织学、胚胎学、病理学教学与科研中最基本、使用最广泛的技术方法。 TTC染色是TTC和活细胞线粒体内的琥珀酸脱氢酶反应，生成红色的甲月赞，用来表示细胞的活力。

5、在实验中使用两种混和的固定液。由于Carnoy首先使用的甲醇和冰乙酸混合液而称的卡诺氏固定液是效果良好的固定液。

染植物用番红水溶液还是酒精溶液

番红是碱性染料，能溶于水和酒精。通常配成1%水溶液染植物的木质部，也可以按照以下配方配成苯胺番红液对组织进行块染：番红5g，95%乙醇50mL，苯胺油20mL，蒸馏水450mL。

番红在一些染色的实验计划表中用作复染剂，将所有的细胞核染成红色。可溶解于水和乙醇。通常配成1%水溶液染植物的木质部，也可以按照以下配方配成苯胺番红液对组织进行块染：番红5g，95%乙醇50mL，苯胺20mL，蒸馏水450mL。

先在材料上滴上1滴浓盐酸，然后滴上间苯三酚-酒精液1滴，木质化的细胞壁就染上樱红或紫红色。配方六 木质化细胞壁染液（Ⅲ）取1克番红，溶于99毫升蒸馏水中，即成1%番红溶液。

然后将材料漂洗，移入70%乙醇中固定5小时。再将材料放入0.5%-1%的番红或孔雀绿溶液中染色12小时。然后将其放入1%盐酸中脱色3-5分钟。最后用水漂洗后保存于2%甲醛（5%福尔马林）中。

它的水溶液是原生动物的活体染色剂。甲基蓝极易氧化，因此用他染色后不能长久保存。固绿 固绿是酸性染料，能溶于水(溶解度为4%)和酒精(溶解度为9%)。

整理后，吸去多余的水分，在标本上面再加1片载被片，用细线松松地缠扎起来。5)脱水 上述标本放入50%酒精中脱水约l～2 h， 再换人70%酒精中脱水约1～2 h，然后换人纯酒精中2次，每次约l～2 h。

结晶紫染液、番红染液如何配制?

．草酸铵结晶紫染液 A液：结晶紫(crystal violet) 1g 95%酒精 20ml B液：草酸铵(ammonium oxalate) 0．8g 蒸馏水 80ml 混合A、B二液，静置48小时后使用。

(1)结晶紫(crystal violet)液：结晶紫乙醇饱和液(结晶紫2g溶于20mL95%乙醇中)20mL，1%草酸铵水溶液80mL 将两液混匀置24h后过滤即成。

用棉签擦去基质胶和上室内的细胞；染色：常用的染色方法有结晶紫染色、台肦蓝染色、Giemsa染色、苏木精染色、伊红染色等。0.1%结晶紫染色，这种方法有的优势：首先不需要固定细胞，直接染色即可。其次配制简单方便。

将结晶紫染液滴加在已固定的涂片上，染色1分钟后用水冲去剩余燃料3。滴加卢戈氏碘液1分钟后水洗，在滴加95%酒精脱色，摇动玻片至紫色不在脱色为止（约需1分钟），水洗4。用稀释石碳酸复红液复染30秒至1分钟5。

在其它资料上也有配制成0.1%水溶液的，用0.1g溶于10ml水中。因为它的颜色太明显，所以使用时，用量也非常少，一般一滴到两滴就足够了。

常用染色剂的染色剂

1、刚果红，甲基蓝，伊红。常用的医用染色剂有以下几种：刚果红：常用于植物制片和动物组织制片中染色神经轴、弹性纤维、胚胎材料等。甲基蓝：常用于动植物的制片技术中染色神经细胞和细菌制片中不可缺少的染料。

2、配方二 罗氏（Loeffler’s）美蓝染液甲液 取5克美蓝，溶于100毫升95%酒精中，制成美蓝—酒精饱和液。乙液 取氢氧化钾0.01克（或1%氢氧化钾溶液1毫升），溶液也可用于放线菌染色，0.1%浓度可用于酵母菌染色。

3、固绿是一种染含有浆质的纤维素细胞组织的染色剂，在染细胞和植物组织上应用极广。它和苏木精、番红并列为植物组织学上三中最常用的染料。它和苏木精、番红并列为植物组织学上三中最常用的染料。

4、双缩脲试剂，双缩脲试剂可以验证蛋白质的存在。 先将质量分数为0.1 g/mL的氢氧化钠溶液加入组织样液，振荡均匀，再加入质量分数为0.01 g/mL的硫酸铜溶液，振荡均匀。

5、主要对革兰氏阳性菌如葡萄球菌、白喉杆菌，以及绿脓杆菌、白念珠菌、表皮癣菌有杀灭作用，对其他革兰氏阴性菌和抗酸菌几乎无作用。醋酸洋红 在涂抹法与压碎法中，醋酸洋红常被用作核、染色体的固定和染色剂。

芽孢细菌若不通过芽孢染色法,在显微镜下如何识别?

（6）待干燥后，置油镜观察，芽孢呈绿色，菌体呈红色。

⑤先用低倍镜找到悬滴边缘，再换高倍镜，观察时应下降聚光器，缩小光圈，减少光亮，使背景较暗易于观察。（2）压滴法 ①用接种环取2—3环菌液置于洁净载玻片中央。

芽孢杆菌在显微镜不需要染色观察。芽孢杆菌是一类革兰氏阳性菌，通常在显微镜下观察时不需要染色。由于芽孢杆菌细胞壁富含胡萝卜素和其他色素，因此在显微镜下可以呈现出明显的颜色。

再用600倍的显微镜直接观察，既可以看到染成深蓝色的多种细菌和其它微生物。不过此时看到的微生物都已死亡、并被固定，因此看不到它们的活动状态。制取洗手后的对照装片。

给细菌染色的方法都有几种,怎么操作,都用复红染色

(5)用热的Fontana银液覆盖，染色5 min，每隔1 min更换1次染色液( Fontana银液在沸水浴中加热)。细菌涂层的每一部分都始终要浸在染色液中，不能裸露。 (6)用水冲洗，在空气中晾干，镜检。

涂片经火焰固定，加石炭酸复红溶液，徐徐加热至有蒸汽出现，切不可沸腾。染5 分钟（若染色奴卡菌需要延长时间），水洗（吸去水份）。加脱色剂，不时摇动玻片至无色脱落为止，水洗（吸去水份）。

滴加卢戈氏碘液1分钟后水洗，在滴加95%酒精脱色，摇动玻片至紫色不在脱色为止（约需1分钟），水洗4。用稀释石碳酸复红液复染30秒至1分钟5。水洗待干，镜检6。

主要步骤是将细菌涂片、干燥、固定后，以石炭酸复红染液加温进行染色，然后用含酸的酒精脱色，最后用美蓝复染。一般细菌以及标本中的物质都被脱色，抗酸菌则不能，仍为红色。在蓝色背景上呈红色的细菌即为抗酸菌。

细菌形态学检查方法：常用染色方法 1．美蓝染色法 在已干燥、固定好的抹片上，滴加适量的美蓝染色液，经1一2分钟，水洗，干后镜检，结果是细菌呈蓝色。

细菌常用的染色方法：革兰氏染色(最基本)、芽孢染色、荚膜染色、鞭毛染色等。

到此，以上就是小编对于番红染液怎么洗掉的问题就介绍到这了，希望介绍的几点解答对大家有用，有任何问题和不懂的，欢迎各位老师在评论区讨论，给我留言。